蛋白提取及WB步驟

時(shí)間:2023-05-01 06:31:42 資料 我要投稿
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蛋白提取及WB步驟

Western blot 實(shí)驗(yàn) 1)蛋白裂解液的配制:

Urea(7 M)4.2 g,Thiourea(2 M)1.52 g,CHAPS(4% W/V)0.4 g,DTT(1% W/V)0.1 g,ddH2O加至10 ml,1 ml/管分裝-20℃保存?zhèn)溆茫? ml分裝的裂解液中用前加入 Cocktail(1% V/V)10 μl,混勻后于冰上放置備用。

我們用的是國(guó)產(chǎn)的碧云天的全蛋白提取試劑盒 2)蛋白樣品制備

(1)取組織,稱(chēng)重,按照W:V = 1:6的比例加入蛋白裂解液; (2)用勻漿器對(duì)組織進(jìn)行勻漿,勻成糊狀。 (3)4 ℃,冰上放置30min,每10 min振蕩一次;

(4)4 ℃,12000 g 離心30 min,吸上清,分裝置于-70 ℃待用。 3)蛋白濃度測(cè)定(Bradford法) 試劑配制:

考馬斯亮藍(lán)染色液:考馬斯亮藍(lán)G250 0.05 g,95%乙醇25 ml,H3PO4 50 ml,ddH2O加至500 ml,過(guò)濾后儲(chǔ)存于4 ℃。

牛血清白蛋白(BSA):1 mg/ml

步驟:按下列體系配置溶液,混勻后,靜置5 min后,測(cè)OD值(波長(zhǎng)595 nm),將OD值輸入Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,計(jì)算出相關(guān)系數(shù),當(dāng)相關(guān)系數(shù)>0.99才具有可信度。取待測(cè)標(biāo)本,正確設(shè)置reference,取適量標(biāo)本,進(jìn)行濃度測(cè)定。

管 號(hào) 0 1 2 3 4 5

BSA(1 mg/ml)

0 5 10 15 20 25

0.9% NaCl/0.1 M PBS

200 μl 195 μl 190 μl 185 μl 180 μl 175 μl

考染液 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml

我們用的是國(guó)產(chǎn)碧云天的BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒。 4)聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE) (1)凝膠制備:

30.8%丙烯酰胺:丙烯酰胺30 g,甲叉雙丙烯酰胺0.8 g,ddH2O加至100 ml,

置于通風(fēng)櫥內(nèi)攪拌直至丙烯酰胺完全溶解,用0.45 μm微孔濾膜過(guò)濾后4 ℃保存于棕色瓶中備用。

1.5M Tris(pH8.8):Tris 18.17 g,HCl調(diào)至pH8.8,ddH2O至100 ml; 經(jīng)驗(yàn)配制:配制1.5 M Tris(pH8.8)500 ml時(shí)直接加入10 M HCl(即HCl原液)15 ml,不用再調(diào)pH。

0.5M Tris(pH6.8):Tris 6.057 g,ddH2O加至100 ml,HCl調(diào)至pH 6.8。 10%SDS:SDS 1 g,ddH2O加至10 ml。

10%過(guò)硫酸銨:過(guò)硫酸銨0.1 g,ddH2O加至1 ml。

電泳緩沖液:Tris 3.02 g,甘氨酸14.4 g,SDS 1 g,ddH2O加至1000 ml。 轉(zhuǎn)膜緩沖液:Tris(15.6 mM)1.93 g,甘氨酸(120 mM)9 g,ddH2O至1000 ml。

凝膠制備:

成 分 30.8%丙烯酰胺 1.5M Tris(pH8.8) 0.5M Tris(pH6.8) 10%過(guò)硫酸銨 10%SDS TEMED H2O

12%分離膠(5 ml)

2.0 ml 1.3 ml

-- 0.05 ml 0.05 ml 0.002 ml 1.6 ml

5%濃縮膠(4 ml)

0.67 ml

-- 0.5 ml 0.04 ml 0.04 ml 0.004 ml 2.7 ml

步驟:將電泳槽裝置安裝好,根據(jù)需要量配置分離膠,灌注,用飽和正丁醇封液面,室溫30 min~60 min待膠凝固后,去除正丁醇,配制濃縮膠,灌注,將加樣梳放入,室溫30 min~60 min待膠凝固后即可上樣電泳;

(2)上樣:將蛋白質(zhì)標(biāo)本中加入2×Loading Buffer [0.2%(g/v)bromophenol blue, 4%(g/v) SDS, 20% glycerol,200 mM 2-mercaptoethanol(DTT), 100 mM Tris(pH 6.8)],煮沸5 min~10 min,12000 rpm離心后加樣;

(3)電泳:濃縮膠10 mA恒流電泳至交界處,分離膠20 mA恒流電泳至溴酚藍(lán)到達(dá)凝膠下緣,可根據(jù)蛋白分子量的大小確定電泳的位置;

我們是bioworld的機(jī)子,一般可以電泳用恒壓80V跑到底。

5)Western blot分析

(1)半干轉(zhuǎn)膜儀轉(zhuǎn)膜(具體和實(shí)驗(yàn)室機(jī)子有關(guān)):剪與凝膠大小一致的PVDF膜一張(膜用之前的處理:甲醇浸泡min,ddH2O浸泡5min,然后和濾紙一起泡到轉(zhuǎn)緩里),濾紙12張,浸泡于轉(zhuǎn)膜緩沖液中至少20 min,先將濾紙逐層置于轉(zhuǎn)膜儀上,用下膠尺逐層趕盡氣泡,加上PVDF膜,趕盡膜與濾紙間的氣泡,將聚丙烯酰胺凝膠放在PVDF膜上,趕盡凝膠與尼膜之間的氣泡,逐層加上濾紙,要盡量排放整齊;按照0.8 mA/cm2~1 mA/cm2的功率恒流轉(zhuǎn)膜2 h~2.5 h。注意正負(fù)極。

我們一般用的是250ma轉(zhuǎn)兩個(gè)小時(shí)。

(2)將PVDF膜放入含5%脫脂奶粉的TBS中封閉2 h; (3)加入5%脫脂奶粉稀釋的一抗,4 ℃過(guò)夜; (4)次日用TBS洗3次,每次10 min; (5)加入HRP結(jié)合的二抗,37 ℃,1 h; (6)TBS洗4次,每次10 min;

(7)顯影:這個(gè)是根據(jù)各個(gè)實(shí)驗(yàn)室的設(shè)備。

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